在血液系统癌症治疗领域,CAR-T 细胞疗法无疑是一场革命。截至目前,已有七种自体 CAR-T 产品获得 FDA 批准,为无数患者带来希望。然而,这场革命背后却隐藏着生产层面的重重困境:从患者体内提取的 T 细胞需在体外扩增至治疗剂量,这一过程往往耗时 7-14 天,整体生产周期更是长达 16-33 天。更棘手的是,约 13% 的生产失败源于细胞生长不佳,无法达到治疗剂量。与此同时,每剂 40 万美元的高昂成本、生产过程中可能面临的癌症快速进展风险,以及传统培养基中血清带来的安全隐患与供应压力,共同制约着 CAR-T 疗法的普及。
传统 CAR-T 细胞扩增常依赖含胎牛血清(FBS)的培养基,血清中的生长因子虽能支持细胞生长,但批次间差异会加剧生产不稳定性,潜在的病毒污染风险还需额外的安全测试,进一步推高成本。更严峻的是,全球血清产量已接近峰值,未来供应可能面临短缺。在此背景下,开发无异种成分(XF)、无血清(SF)培养基,并结合生物反应器中的高效扩增工艺,成为突破 CAR-T 生产瓶颈的关键方向。

灌流工艺早已在单克隆抗体、疫苗等生物制药生产中展现优势 —— 通过持续置换培养基,补充关键营养、去除有毒副产物,为细胞营造稳定的生长环境。如今,这一技术与生物反应器结合,成功应用于 CAR-T 细胞扩增,尤其在搅拌罐生物反应器中,通过优化灌流参数,实现了突破性进展。
研究团队采用高通量灌流搅拌罐式生物反应器,以 4Cell®Nutri-T GMP 无血清培养基为基础,通过实验设计(DOE)方法系统评估了灌流速率(0.25、0.5、1.0 VVD)、灌流起始时间(接种后 48、72、96 小时)及供体差异对 CAR-T 细胞生长的影响。结果令人振奋:当在接种后 48 小时以 1.0 VVD 的速率启动灌流时,生物反应器内细胞扩增效果** ——7 天内细胞浓度可达 21.20×10⁶ cells/mL,与传统补料分批工艺相比,最终细胞产量提升 4.5 倍,达到治疗剂量的时间缩短超 50%。
更值得关注的是,生物反应器灌流工艺下的 CAR-T 细胞展现出优异的质量属性。通过流式细胞术分析发现,收获的细胞中 90% 以上为幼稚型(CCR7+CD45RO-)和中枢记忆型(CCR7+CD45RO+)T 细胞,这类细胞具有更强的体内持久性,是保证治疗效果的关键。同时,细胞表面的衰竭标志物(PD1、LAG3、TIM3)表达量从接种时的 46%±6.7% 降至不足 3%,避免了细胞功能衰退。即便在搅拌罐生物反应器的剪切力环境下,细胞活力仍能维持在 90% 以上,打破了 “T 细胞对剪切力敏感,需静态培养” 的传统认知,证明无血清培养基在生物反应器动态培养中的稳健性。

图 1 . 使用更高的 ATF 灌流速率,同时启动得更早,最终 CAR-T 细胞产量增加4倍,达到剂量的时间减少一半。(A)使用包含 n = 17个灌流实验的半因子实验设计 (DOE),在 Ambr 250 中研究了 ATF 灌流速率 (0.25、0.5、1.0 VVD)、起始时间 (48、72、96 小时) 和供体 ( n = 3 )对无异种、无血清培养基中 CAR-T 细胞生长的影响。(B)每日活细胞浓度、(C)活力、(D)总细胞产量和(E)倍数扩增。灌流培养以补料分批工艺 (黑线) 和静态 T 瓶培养 (绿线) 为基准。(F)使用多项式回归建模灌流速率和开始时间对 CAR-T 倍数扩增的影响,并可视化为每个健康供体 (HD) 的等高线图。(G)绘制中心化和标准化回归系数以揭示它们对倍数扩增的相对贡献。使用方差分析评估每个回归模型系数,如果 p < 0.05 则认为显著。(H)交互作用图显示灌流开始时间和速率对最终倍数扩增的综合影响。(I)模型预测与观察到的倍数扩增之间的相关性。数据显示为n = 17 Ambr 250 DOE 灌流培养物,其中有三个供体,每个供体n = 1 补料分批培养,每个供体n = 3 T 瓶培养。补料分批和 T 瓶数据以平均值±SD 表示。
培养基成本是 CAR-T 生产的主要开支之一,如何在生物反应器中保证细胞产量的同时减少培养基消耗,成为工艺优化的核心目标。研究团队观察到,CAR-T 细胞在生物反应器内的扩增存在明显的动态规律:接种后经历滞后期,随后进入快速增殖期,后期生长速率逐渐放缓,葡萄糖消耗和乳酸生成也随之下降。这一特性为生物反应器中的 “按需灌流” 提供了可能 —— 即根据细胞代谢需求调整灌流速率,避免生长后期的培养基浪费。
基于此,团队在生物反应器中开发了 “自适应灌流策略”:灌流在接种后 24 小时以 1.0 VVD 启动,从第 3 天起每天降低 0.05 VVD。对比生物反应器中传统固定速率灌流(基线工艺)和高灌流(1.5 VVD)工艺,自适应策略展现出显著优势:在 12 天的培养周期内,生物反应器内细胞最终浓度(33.5±3×10⁶ cells/mL)、扩增倍数(130±9.7 倍)与基线工艺相当,但培养基消耗量减少 11%;而高灌流工艺虽消耗更多培养基(比基线多 50%),却未带来产量提升,证明生物反应器中存在 “灌流上限”,盲目增加灌流速率并无必要。
与静态培养相比,生物反应器中自适应灌流的效率优势更为突出。12 天内,生物反应器可生产 17-19 剂 CAR-T 细胞(按 2 亿个 CAR+T 细胞 / 剂计算),是 G-Rex 培养的 2.5 倍以上;且每剂细胞仅消耗 119 mL 培养基,比 G-Rex 的 140 mL 更具成本效益。此外,生物反应器自适应灌流工艺下的 CAR-T 细胞仍保持出色的体外细胞毒性 —— 与 CD19+NALM6 靶细胞共培养 48 小时,可有效清除靶细胞,同时分泌足量的干扰素 -γ(IFN-γ)和肿瘤坏死因子 -α(TNF-α),确保治疗功能不受影响。
自体 CAR-T 生产面临的**挑战之一,是患者间的细胞质量差异 —— 不同患者因前期化疗、疾病状态等因素,起始 T 细胞的活性和增殖能力存在显著不同,生物反应器中固定的灌流参数难以适配所有情况。研究发现,尽管 “早启动、高速率” 是生物反应器灌流的普适性优化方向,但**灌流组合仍需根据供体调整:部分供体在 48 小时启动灌流效果**,而另一些供体则在 60 小时启动时,生物反应器内细胞产量更高。
这一发现推动了 “生物反应器供体特异性灌流优化” 的探索。通过建立多项式回归模型,可针对不同供体预测生物反应器中的**灌流参数,**限度减少因起始细胞质量差异导致的生产失败。同时,结合时间维度的自适应调整(如根据细胞代谢动态调整速率),有望在生物反应器中形成 “双维度自适应灌流体系”—— 既考虑供体个体差异,又匹配细胞生长的动态需求,进一步提升生产稳定性和产量。
此外,无血清培养基的应用也为解决供体差异带来助力。传统含血清培养基中,血清批次间的成分波动会加剧生物反应器内细胞生长的不确定性,而无血清培养基成分明确、稳定性高,可减少额外变量,使生物反应器中灌流参数的优化更精准地作用于细胞本身,为个性化灌流提供更可靠的基础。

从传统补料分批到生物反应器中的无血清灌流,从固定参数到自适应策略,CAR-T 细胞生产工艺的每一步优化,都在朝着 “更快速、更经济、更稳定” 的目标迈进。本研究证明,通过优化生物反应器中灌流起始时间和速率,可将 CAR-T 细胞扩增时间缩短一半、产量提升 4.5 倍;而生物反应器中的自适应灌流策略在保证细胞质量的同时,减少 11% 的培养基消耗,为降低治疗成本提供了可行路径。
未来,随着过程分析技术(PAT)与生物反应器的集成,实时监测葡萄糖、乳酸等关键代谢物,实现灌流速率的自动调控将成为可能。这不仅能进一步提升生物反应器工艺稳定性,还能为患者量身定制灌流方案,解决供体差异难题。对于需要超大剂量的细胞疗法(如肿瘤浸润淋巴细胞 TIL 疗法),生物反应器灌流工艺也有望大幅缩短生产时间、提高产量,推动更多创新疗法从实验室走向临床。
在 CAR-T 疗法逐渐从 “天价小众” 向 “可及性疗法” 转型的过程中,生物反应器相关工艺的革新无疑是核心驱动力。生物反应器中无血清灌流技术的突破,不仅为当前自体 CAR-T 生产提供了优化方案,更为未来通用型同种异体 CAR-T 疗法的规模化生产奠定基础,有望让更多癌症患者受益于这场细胞治疗革命。
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